Проблеме эмбриональной смертности у сельскохозяйственных животных посвящено большое количество научных исследований.
Впервые в 1914 году ученый Хаммонд обнаружил пренатальные потери у свиней. При вскрытии в середине супоросности он обнаружил, что из 23 плодов нормально развивались только 12, а 11 плодов находились на разных стадиях разрушения.
На современном этапе ведения молочного животноводства достаточно острой проблемой является увеличение числа случаев эмбриональной смертности у осемененных животных.
По многочисленным данным отечественным и зарубежным исследователей, оплодотворяемость у крупного рогатого скота составляет 90-95%, критический период развития переживало только 50-55% зародышей.
Наибольшие пренатальные потери происходили в предпланцентационный и плантационный периоды внутриутробного развития (Милованов В.К. и соавторы). Следовательно, 25-30% погибают в течение первых 19 дней и 40-45% -до 40 го дня развития (Аголон, 1972).
Исследования иностранных ученых (Perry I.S., 1954; Casida G.E., 1959) показали, что эмбриональная смертность может достигать больших размеров. В норме эмбриональная смертность составляет 15-20% на 100 голов. При неблагоприятных условиях содержания и кормления она может возрасти до 35-90%.
У свиней потери в течение беременности больше, чем у других видов животных (Wilson R.F., Nalbandov A.V., Krider I.G., 1949; Robertson C.G., GrummerR.R, Casida G.E. и Chapman A.B., 1951).
Однако внутриутробная гибель установлена и у других видов сельскохозяйственных животных. У коров она может достигать 20-36% (Соколовская И.И., Бабичева Л.Я., 1966; Таутерис В.Р., 1966; Жаркий В.В., 1966 и др. у овец - 11-39% (Мингазов Т.А., 1974), у крольчих до 33% (Баранчук А.Т., 1972; Adams С.Е., 1959).
Исследования эмбриональной выживаемости у овец (Hulet C.V., Volgtlander Н.Р., Pope A.G. и Casida G.E., 1956) показали, что 20% эмбриональных потерь имеет место на 18-ый день и 30% на 40-ой день.
По данным R.H. Dutta и Е.С. Simpsona (1957) эмбриональная гибель у овец достигла 48%. F.T. Day (1957) обнаружил несоответствие между положительной жеребостью (в период около 40 дней) с данным выжеребки у 200 кобыл. Разница составляла 11%. RW. Hawk, J.N. Wiltbank, RE. Kidder и G.E. Casida, (1955) выяснили, что число нормальных эмбрионов на 16 и 34 дни после осеменения у проблемных коров было 29 (58%) и 14 (28%) соответственно. G.E. Casida (1953) установил, что у большего числа повторно осемененных коров эмбриональная смертность к 34-дню достигла 59%.
У пушных зверей (лисиц, норок и песцов) гибель зародышей в период утробного развития иногда достигает 60-70% (Воробьев Б.Л., Петухов В.В., 1954).
Было исследовано 124 самки голубого песца. Размер эмбриональной смертности определяли по разнице между числом пигментированных пятен на матке, образующихся в местах имплантации зародышей, и числом фактически рожденных щенков. На основании полученных результатов выяснилось, что всех плодов вынашивали меньше 30% самок, у остальных происходила частичная гибель эмбрионов.
У кроликов до стадии бластоцисты достигают 90% зародышей, 40-60% эмбриональных потерь происходит во время имплантации, тогда как в плодный период погибает не более 10% зародышей (Соколовская И.И., Бондаревская Л.Ф., 1965).
У мышей эмбриональная выживаемость составляет 85-90%, лишь при некоторых видах межлинейного спаривания пренатальные потери достигают 30-60% (Chaouat G., Kolb J. P., Kiger N., etal., 1985; Wegmann T.G., 1988).
Таким образом, у разных видов млекопитающих, несмотря на существенную разницу в строении плаценты и сроках беременности, величина пренатальной выживаемости и периоды наибольшего ее снижения примерно одинаковы.
У млекопитающих можно различить несколько периодов внутритрубного развития, характеризующихся сменой способа питания (Милованов В.К. и Соколовская И.И., 1943). Яйцо питается посредством фолликулярных клеток используя, в основном, запасы, накопленные в яичнике.
Критический переломный период превращает его в зиготу. Новый перелом наступает в связи с формированием свободно плавающей бластоцисты, питающейся осмотическим путем. Следующий перелом связан с прикреплением к матке и переходом к плацентарному питанию. Эмбрион быстро растет и развивается. Эмбриональный период сменяется плодовым.
В то время, как первые 4 периода четко различимы, установить точную границу между эмбриональным и плодовым периодами не всегда легко.
Одни считают начало плодового периода у коров с 45 дня беременности (Winters G.M., Green W.W., Comstock R.E., 1942). Другие утверждают, что эта граница крайне условна (Melton A.A., Berry R.O. и Butler O.D., 1951; Chang М.С., 1952).
В большинстве случаев принято называть эмбриональной смертностью гибель зигот, бластоцист и эмбрионов.
Внутриутробную гибель на более поздних этапах развития называют плодовой смертностью. Высокую смертность эмбрионов (до 23%) с 20 по 60 дни утробного развития наблюдали И.И. Яновский с соавторами (1970).
Освободившаяся от прозрачной оболочки бластоциста представляет собой полый внутри шар, наружная стенка которого состоит из одного слоя питающих клеток (трофобласт), а внутри на одном из полюсов бластоцисты, располагается скопление собственно зародышевых клеток (эмбриобласт).
В просвете матки бластоциста остается свободной и перемещается до 13–14 дня (K.M. Shelesnyak, 1960; C. Lutwak – Mann, 1959). В конце этого периода бластоциста прикрепляется трофобластом. к слизистой оболочки стенки матки имплантируется. В этот период отмечена высокая повреждаемость и смертность зародышей. Разного рода неблагоприятные факторы извне могут, не повреждая самого зародыша, нарушить ход становления его связи с материнским организмом. К числу таких факторов относится патогенная и условно патогенная микрофлора.
А.И. Сергиенко и соавторы (1988) обнаружили в среде Дюльбекко после вымывания эмбрионов 6 видов бактерий: St.albus, St.citreus, B.subtilis, E.coli, Pr.vulgaris, грибы.
Анализируя литературные данные Н.А. Мартыненко (1971) пишет, что обычно эмбриональная смертность на почве инфекции завершается изгнанием плода. В абортированном материале чаще всего обнаруживаются стрептококки и стафилококки. Проникнув в матку, они находят там подходящую для себя среду и быстро размножаются, вызывая некроз котиледонов и нарушая таким образом связь плода с маткой, кроме того они проникают в ткани плода и отравляют его своими токсинами или вызывают внутриутробную инфекцию (Д.Д. Логвинов, В.П. Плугатырев, Г.Г. Хатура, А.Г. Миллер, 1988).
Установлено, что матка коровы наиболее чувствительна к инфекциям в лютеальную фазу полового цикла, вначале которой трансплантируются эмбрионы. Большинство авторов отмечают, что при нехирургической трансплантации катетер проходя через влагалище в шейку матки, неизбежно захватывает огромное количество микробов. Проблема микробной деконтаминации решается за счет антибиотиков или же надежной асептики. Последнее обеспечивается помещением трансплантационного инструмента в защитный чехол для проведения его через влагалище.
В литературе имеется достаточное количество сведений о наличии микрофлоры в матке коровы в разные периоды полового цикла и влияние ее в период беременности на материнский организм и зародыш.
Поможем написать любую работу на аналогичную тему